产品信息

注:Buffer WS在使用前需添加60 mL(PU009-01)/120 mL(PU009-02)无水乙醇。
产品描述
本试剂盒采用碱裂解法和硅基质离子交换柱,适于从1 ~ 5 mL细菌培养液中提取质粒DNA。本试剂盒中的纯化柱可以结合的质粒上限约为15 μg,抽提得到的质粒可直接用于各种常规实验,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等。
储存条件
单独的RNase A或者加入RNase A的Solution I请于2 ~ 8℃存放,其余组分可室温保存,有效期12个月。
自备试剂
小型高速离心机,乙醇。
注意事项
1. 第一次使用前把试剂盒提供的RNase A全部加到Solution I中,混匀,并在瓶上做好标记。加入RNase A后4℃存放;
2. 若Solution Ⅱ和Solution Ⅲ出现浑浊现象,可在37℃加热溶解,溶液转为澄清后即可使用,请在使用后及时盖紧盖子;
3. 洗脱体积不应少于30 μL,体积过小会影响洗脱效率;
4. 为保证您的安全和健康,请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩进行操作。
使用方法
注意:第一次使用前,请在RNase A全部加入到Solution I中,并在瓶上做好标记,于2 ~ 8℃保存。
1. 取1 ~ 5 mL菌液,12000 rpm离心1 min,尽量吸除上清(菌液较多时可以多次离心将菌体收集到同一个离心管中);
2. 向离心管中加入250 μL Solution I,用移液枪吹打或涡旋仪将菌体重悬(重悬液应混合均匀,无明显团块或絮状物);
3. 加250 μL Solution Ⅱ,来回颠倒4 ~ 6次轻柔混匀,得到澄清的裂解液,静置2 ~ 3 min(请避免剧烈混匀,且裂解时间不要超过5 min);
4. 加350 μL Solution Ⅲ,颠倒混匀几次直至出现白色絮状沉淀,室温放置2 ~ 3min让其充分反应,室温下12000 rpm离心10 min;
5. 吸取上一步骤离心后的上清至质粒纯化柱中(纯化柱套入收集管中),12000 rpm离心1 min,倒弃收集管内液体,将吸附柱重新放回收集管中;
6. 向纯化柱中加入700 μL Buffer WS,12000 rpm离心1 min,倒弃收集管内液体,将吸附柱重新放回收集管中;
7. 重复步骤6一次;
8. 12000 rpm离心2 min,将纯化柱敞口于室温下放置2 min,使纯化柱中残留液体完全挥发;
9. 将纯化柱转移至新的洁净EP中,向吸附膜中央悬空滴加50 ~ 100 μL Elution Buffer(亦可用Nuclease-free Water替代),静置1 min,12000 rpm离心1 min。若想增加质粒的回收效率,可重复一次洗脱步骤;
10. 弃去纯化柱,所得质粒可直接用于后续实验,或于-20℃保存。
常见问题
(一)质粒得率低
1. 质粒拷贝数低:增加菌量,或更换具有相同功能的高拷贝数载体;
2. 菌株老化:涂布平板培养后,重新挑选单菌落进行液体培养;
3. 菌体中无质粒:细菌培养时间过长,细菌大量死亡,会导致质粒丢失;可能有些质粒在某些菌种中无法稳定存在,多次转接后可能丢失;请检查筛选用的抗生素浓度是否正确;
4. 菌体裂解不充分:尝试减少菌量或增加Solution I,Ⅱ,Ⅲ用量;
5. 洗脱不充分:洗脱液pH不适宜会导致洗脱效率低,请确保洗脱液的pH>7.5。建议对洗脱液适当加温或延长孵育时间。
(二)质粒纯度不高
1. 混有RNA:RNase A消化不彻底,尝试减少菌量或加入Solution Ⅲ后延长放置时间。若Solution I放置时间较久,请重新加入RNase A;
2. 混有基因组DNA:若加入Solution Ⅱ后剧烈震荡,可能会使基因组DNA断裂并混杂在质粒中;
3. 乙醇残留:洗涤后上清未吸净或磁珠未完全干燥,导致洗脱液污染;
4. 质粒的二聚体和多聚体形式:质粒复制过程中形成,与宿主菌相关,电泳可检测。


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