产品信息

特别注意:
PU006-01:Fixation Buffer在使用前请加入7.5 mL的无水乙醇,混合均匀后短期室温保存,长期保存建议置于2 ~ 8℃。
Lysis Buffer A液常温保存,Lysis Buffer B液2 ~ 8℃保存。
Wash Buffer在使用前请加入6.4 mL的无水乙醇,混合均匀后可室温保存。
PU006-02:Fixation Buffer在使用前请加入75 mL的无水乙醇,混合均匀后短期室温保存,长期保存建议置于2 ~ 8℃。
Lysis Buffer A液常温保存,Lysis Buffer B液2 ~ 8℃保存。
Wash Buffer在使用前请加入64 mL的无水乙醇,混合均匀后可室温保存。
产品概述
本试剂盒是一种使用新型核酸纯化介质包被的磁珠,可以从大肠杆菌HT115诱导表达的菌液中提取并纯化dsRNA的试剂盒,本试剂盒利用优化的缓冲液体系,可从大肠杆菌表达的菌液中安全、便捷、稳定、高效、高质量地提取dsRNA,利用磁珠纯化dsRNA,可有效去除样品中的蛋白质、盐离子、细胞碎片等杂质,最终获得高质量的dsRNA。
产品特点
1. 操作简捷,无须酚氯仿抽提,无须过柱纯化,提取的dsRNA纯度较高。
2. 产品可常温保存,稳定性好。
储存条件
该产品Lysis Buffer B液2 ~ 8℃保存,其余组分均可常温储存。
自备材料
1. 无水乙醇、Nuclease-free离心管及枪头、磁力架需自备。
2. 实验中所使用的无水乙醇需新开封或者日常专用于RNA提取。
使用方法
单次诱导表达5 mL的菌液,提取纯化实验步骤如下:
1. 将诱导表达后的菌液5 mL,置于4℃,6,000×g,5 min离心,弃去培养液,收集细胞菌体。
2. 加入500 μL Fixation Buffer(请先检查是否已加入无水乙醇),使用移液器或涡旋混匀仪振荡至菌体完全重悬。
3. 4℃静置5 min后,10,000×g,离心5 min,弃去培养液,收集细胞菌体。
4. 加入100 μL Lysis Buffer A液,充分重悬细胞菌体,加入10 μL Lysisi Buffer B液,充分混匀后,37℃反应20 min。
5. 4℃,10000×g,10 min离心,收集上清液。
注意:收集的上清液即为dsRNA粗提液,可取少量dsRNA粗提液用琼脂糖凝胶电泳检测。
6. (可选步骤)在上清液中加入适量的DNase I进行消化,37℃反应30 min。
7. 取上一步的上清液置于Nuclease-free的1.5 mL离心管中,加入100 μL的Clean MagBeads,充分混匀后于室温孵育8 min。
注意:Clean MagBeads使用前必须混匀,否则会影响样品的回收率。
8. 将样品置于磁力架上磁吸5 min,待磁珠完全聚集后,小心移除上清液(离心管仍置于磁力架上)。
9. 保持样品置于磁力架上,加入200 μL的Wash Buffer(请先检查是否已加入无水乙醇)漂洗磁珠,室温孵育30 s,小心吸去上清。
注意:通常Wash Buffer最少用量是上述Clean MagBeads用量的2倍,可适当增加用量,Wash Buffer需完全浸没磁珠,加入时注意不要扰动磁珠。
10. 重复上一步操作,共漂洗两次,尽量吸净残留液体。
11. 保持样品置于磁力架上,室温下开盖干燥磁珠3 ~ 5 min,使残留的乙醇等液体完全挥发(磁珠表面无明显光泽即可)。
注意:磁珠开盖干燥时间不可过长,防止磁珠过分干燥龟裂,导致核酸洗脱回收率降低。
12. 将样品从磁力架取出,加入50 ~ 100 µL Elution Buffer(亦可用Nuclease-free Water替代),用移液枪轻轻吹打混匀,室温孵育3 min。
13. 将样品置于磁力架上,待磁珠完全聚集后(约2 min左右),小心吸取上清至新的Nuclease-free离心管中,可预留1 ~ 2 µL液体,以防止吸取到磁珠。
14. 检测提纯的dsRNA样品,并于-80℃储存。
注意事项
1. 可根据上述实验步骤等比例放大或缩小提取纯化不同体积的菌液。
2. 提取较大体积的菌液时,获得dsRNA粗提液较多,需分成多管进行磁珠纯化,推荐每管纯化500 μL dsRNA粗提液。
3. 如需获取更高纯度的dsRNA,可自备DNase I和RNase A进行消化处理,具体操作方法参考试剂说明书进行。
4. 提纯的dsRNA浓度与诱导表达的条件有关,可从培养基、诱导时间、诱导温度以及IPTG浓度等方面进行优化。

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